A széklet vizsgálata laboratóriumi vizsgálat, amelyben széklettel (széklettel) vizsgálják a bél parazitáinak kimutatása céljából. Ez az egyik legegyszerűbb és legrégebbi laboratóriumi technika, amelyet eredetileg Anton Van Leeuwenhoek fejlesztett ki a 18. században.
Anton Van Leeuwenhoek, akit a mikrobiológia atyjának tekintett, a "széklet" koproparasitoszkópos módszerét alkalmazta saját székletének megfigyelésére, és leírta, hogy mely évvel később azonosították a Giardia lamblia trophozoitáit, egy protozoát, amely megtámadja az ember vékonybélét.
Ascaris lumbricoides felnőtt forma (Forrás: Wikimedia Commons)
A parazita betegségek a millió ember millióit érintik a világon, különösen a szegény vagy fejletlen országokban, ahol a ürülék ártalmatlanításához és a szennyezett víz fogyasztásához rossz egészségügyi feltételek vonatkoznak.
Ezen betegségek diagnosztizálása fontos a megfelelő kezelés szempontjából, mivel a koproparasitoszkópos vizsgálat elengedhetetlen eszköz ehhez. Ez egy egyszerű, gyors és olcsó laboratóriumi vizsgálat.
A székletvizsgálat számos technikát foglal magában, amelyek amellett, hogy lehetővé teszik a tojások, a trophozoiták, a ciszták vagy a lárvák közvetlen megjelenítését és mennyiségi meghatározását, lehetővé teszik a mikroorganizmus szerkezeteinek azonosítását és ezáltal a parazita azonosítását.
A koproparasitoszkópos vizsgálathoz használt technikák magukban foglalják a metilénkék festési technikákat, a koncentrálási módszereket, a Faust, a Richie technikát, az ülepedési technikákat és a közvetlen, egy vagy sorozatos vizsgálatokat.
Fertőtlenített Ascaris lumbricoides tojás. (Forrás: Betegségek Ellenőrzési és Megelőzési Központjai, a Wikimedia Commons segítségével).
Mintavétel
A vizsgálat elvégzéséhez a betegnek friss székletmintát kell vennie, amely nem szennyezett vizelettel, vízzel, vérrel (menstruációs) vagy a talajjal. A mintának dió méretűnek kell lennie, vagy ha folyékony, akkor legalább a két evőkanálnak megfelelő mennyiségűnek kell lennie.
A betegnek legalább a mintát megelőzően három napig, vagy az orvosa által megjelölt ideig nem szabad parazitaölő gyógyszereket szednie. Nem szabad hashajtókat is használni.
A mintákat száraz, széles szájú, fedéllel ellátott tartályba vagy speciálisan elkészített eldobható tartályba kell helyezni (a kívánt gyógyszertárban kapható). A mintákat hűvös környezetben kell elhelyezni, nem hűthetők 24 óránál tovább, és nem szabad hőforrások közelében tárolni vagy fagyasztani.
Ha a feltüntetett vizsgálat soros, legalább három mintát kell elvégezni, amelyeket legalább 24 óránként kell venni, az orvos jelzése szerint. Ezekben az esetekben a laboratóriumok általában lombikkészletet biztosítanak tartósítószerekkel készített oldatokkal.
Amikor a beteg észlel valamilyen "férget" a székletben, akkor, ha lehetséges, zárt üvegbe kell helyezni, és a székletminta üvegével együtt a laboratóriumba kell vinni.
A mintákkal vagy a "férgekkel" ellátott fiolákat fel kell címkézni és azonosítani kell a beteg nevével, életkorával, nemével és a mintavétel dátumával és idejével.
Nagyon fontos, hogy a mintavétel és kezelés mindegyik aspektusát megfelelõen tájékoztassuk a beteget, mivel ez attól függ, hogy a mintában lévõ elemek továbbra is életképesek lehetnek-e megfigyeléshez, azonosításhoz és diagnosztizáláshoz.
technikák
Vannak közvetlen coproparasitoscopic vizsgálatok, valamint a minták szuszpenziós és koncentrálási technikái, amelyeket sokszor használnak a hamis negatívok elkerülésére és a sokkal tisztább minták megfigyelésére. Néhány festési technikát alkalmaznak bizonyos paraziták azonosítására.
Közvetlen vizsgák
A széklet közvetlen vizsgálata a függőben lévő csepp módszerrel a széklet mintájának fiziológiás oldattal (0,9% NaCl) hígítását és ennek az oldatnak egy cseppjét egy konkávban helyezi el, amelynek egy speciálisan használt tárgylemeze van. ebből a célból.
Miután a csepp a tárgylemezre került, azt fedőlemezzel lefedik és a mikroszkóp alatt megfigyelik. Ez a technika lehetővé teszi a petesejtek és ciszták megfigyelését, de lehetővé teszi számunkra bármilyen mozgó elem megfigyelését is, például flagelátok, lárvák, trophozoiták, ciliátok stb.
Szuszpenziós és koncentrálási technikák
A szuszpenziós technikáknál a megfigyelt elemeknél sűrűbb oldatot alkalmaznak, így ezek a folyadék felületén úsznak és összegyűjthetők, mivel az oldat felületi rétegében koncentrálódnak.
Ennek a módszernek az az előnye, hogy lehetővé teszi egy meglehetősen tiszta törmelékmintát, mivel ezek sűrűbbek a palack alján maradnak. Relatív hátránya, hogy az oldat rövid idő alatt zsugorodik és deformálja a mikroorganizmusokat.
Ezeket a módszereket nem használják helmintákra és cestode tojásokra, mert nagyon nehézek és nem úsznak ezekben az oldatokban. Széles körben használják protozoák megfigyelésére tropozoik formájukban vagy tojásaikban, valamint lárvák megfigyelésére, például a Strongyloides stercoralis.
Egy másik módszer, amelyet széles körben használnak, mivel nem deformálja a mintában levő mikroorganizmusokat, és egyszerű és olcsó a formalin ülepítés technikája.
A koncentrációs technikákra példa a Faust és Richie technikái.
A különböző technikák, amelyek lehetővé teszik a petesejtek, lárvák vagy a különféle bélparaziták más elemeinek mikroszkopikus megjelenítését, a festési technikákkal kombinálva lehetővé teszik e betegségek azonosítását és diagnosztizálását.
Példák
Ezután egy klinikai esetet írnak le, és néhány képet mutatnak, amelyek szemléltetik a székletvizsgálat hasznosságát a diagnózisban és a kezelés előnyeinek kiértékelésében.
Trichuris trichuria tojás (Forrás: CDC / Dr. Mae Melvin, jóvoltából: Közegészségügyi Képkönyvtár a Wikimedia Commons segítségével)
Egy 18 éves férfi beteg colicky hasi fájdalom miatt érkezik az orvosi rendelőbe, amely fokozódik a periumbilicalis területen, émelygést és vizes hasmenés epizódot jelent.
A beteg megkérdezésekor az orvos két kiemelkedő pontot vont le: 1) a beteg arról számolt be, hogy egy vidéki térségben fürdött és 2) meglepte, hogy székletét a WC-ben úszta. A beteg megvizsgálása után az orvos gyanítja a Giardia lamblia jelenlétét.
A Giardia lamblia életciklusa (Forrás: LadyofHats a Wikimedia Commons segítségével)
Ez a protozoán az ember vékonybélében helyezkedik el, és akadályozza a zsír felszívódását, ami nagyon zsíros széklet képződik, amely hajlamos úszni. A szennyezés gyakran előfordul a vidéki tavak vagy patakok szennyezett vízéből, vagy a rosszul karbantartott medencékből vagy pezsgőfürdőkből.
Giardia lamblia trophozoites (Forrás: Fotó: Eva Nohýnková, a Trópusi Orvostudományi Tanszék, a Prágai Károly Egyetem 1. Orvostudományi Karának és a Bulovka Kórháznak, Cseh Köztársaság. Kép papíron: Marie Lipoldova, a Molekuláris és Sejtes Immunológiai Laboratórium, Molekuláris Intézet) Genetika, Cseh Tudományos Akadémia, Prága, Cseh Köztársaság a Wikimedia Commons segítségével)
Az orvos székletvizsgálatot rendel el, és az eredmények megerősítik a Giardia lamblia jelenlétét. A kezelés befejezése után újabb székletvizsgálatot kell indítani, amely megerősíti a Giardia lamblia cisztáinak vagy trophozoitjainak hiányát.
Irodalom
- Buonfrate, D., Mena, MA, Angheben, A., Requena-Mendez, A., Muñoz, J., Gobbi, F.,… és a COHEMI Project Study Group. (2015). A strongyloidiasis prevalenciája Latin-Amerikában: az irodalom szisztematikus áttekintése. Epidemiology & Infection, 143 (3), 452-460.
- Haro Arteaga, I. és Ruiz, AEC (2014). Diagnózis a. Orvosi parazitológia (4a, 347.
- Mendoza, D., Nunez, FA, Escobedo, AA, Pelayo, L., Fernandez, M., Torres, D., és Cordovi, RA (2003). 2 koproparasitológiai módszer hasznossága és alkalmazása antigiardiasis terápiás vizsgálatban. Cuban Journal of Tropical Medicine, 55 (3), 174-178.
- Ár, -DL (2017). Eljárási kézikönyv a bél parazita diagnosztizálására. CRC Press.
- Sahin, I., Kiliç, H., Ozca, M., és Orhan, R. (1984). Kopoparazitológiai vizsgálat a nemzeti csapat birkózóiról. Mikrobiyoloji bülteni, 18. (2), 114-118.