- bázis
- Készítmény
- Házi kukoricadara készítés
- Kereskedelmi kukorica liszt agar
- Kukoricaliszt agar Tween 80-dal
- Kukoricaliszt agar glükózzal
- Használat
- elvetett
- Chlamydospore demonstráció
- Gomba törzsek fenntartása
- QA
- korlátozások
- Irodalom
A kukoricadara agar szilárd tápközeg, alacsony táplálkozási képességgel rendelkezik, felhasználható bizonyos gombák altenyésztésére és a Candida albicans komplex törzseiben található chlamydospórák kimutatására. Angolul Corn Meal Agar néven ismert.
A hagyományos kukoricadara közeg nagyon egyszerű összetételű, kukoricadara, agar-agart és vizet tartalmaz. Alacsony táplálkozási szintje miatt ideális a gombás törzsek, különösen a fekete gombák fenntartásához mérsékelt ideig.

A. A Candida albicans komplex grafikus ábrázolása a kukoricaliszt agaron. B. A Candida albicans komplex chlamydospórái, mikroszkóp alatt látva, kukoricadara agaron. Forrás: A. GrahamColm / B. Írta: CDC / Dr. William Kaplan, jóvoltából: Közegészségügyi Image Library.
Ebben a közegben a Candida albicans komplex sporulációja kedvező, ha a agar előállítása során a Tween 80 1% -át adjuk hozzá. A chlamydospórák kialakulása e fajra jellemző, és gyakorlatilag az egyetlen, amely az embereket érinti.
Vannak más fajok is, amelyek chlamydospores képeznek, de valószínűtlen, hogy befolyásolják az embereket, mint például a pingvin ürülékében jelen lévő Candida australis vagy a ritkán előforduló szaprofit C. clausenii. Hasonlóképpen, kivételesen a C. stellatoidea és a C. tropicalis fajok képezhetik őket.
Másrészről, a glükóz hozzáadása a kukoricadara táptalajhoz elősegíti a pigmentek képződését a Trichophytom rubrum törzsekben.
Fontos kiemelni, hogy vannak olyan gombák, amelyek nem képeznek hyphae vagy pseudohyphae-t a kukoricadara-agarban, például a Cryptococcus neoformans, amelyek különböznek a többi nemzetségtől.
A kukoricamag-agar elkészíthető otthon a laboratóriumban, vagy kereskedelmi közegek is felhasználhatók.
bázis
A kukoricadara a szubsztrát, az agar a megszilárdító anyag, a víz az oldószer.
A kukoricamag-agart tween 80-dal (szorbitán-monooleát vagy poliszorbát-poliészter 80) lehet kiegészíteni. Ez a vegyület emulgeáló ereje miatt csökkenti a közeg felületi feszültségét.
Ez egy olyan ellenséges környezetet is létrehoz, amely gátolja a túlzott sejtszaporodást és serkenti a hyphae növekedését, ugyanakkor elősegíti a chlamydospórák termelődését; ez utóbbi az ellenállás szerkezeteit tekintette meg. Ez a szerkezet segíti a Candida albicans fajok azonosítását.
A glükóz ebben a közegben maga növeli egyes gombák pigmentképző képességét.
Meg kell jegyezni, hogy a kukoricadara tápközeg glükózzal nem használható chlamydospórák kimutatására a Candida albicans komplexben.
Készítmény
Házi kukoricadara készítés
Mérjünk ki 47 g sárga kukoricaliszt és oldjuk fel 500 ml desztillált vízben. Melegítsük 60 ° C-ra, miközben a készítményt körülbelül 1 órán át keverjük. Ezután szűrjük át egy darab gélen és pamuton, adott esetben újra szűrhetjük úgy, hogy a készítményt Whatman No. 2 szűrőpapíron vezetjük.
Töltsük fel 1000 ml-re desztillált vízzel. Adjunk hozzá 17 g agar-agart, melegítsük feloldódásig. Autokláv 15 percig 121 ºC-on.
Tálaljuk steril Petri-csészékben. Hűtőszekrényben tárolandó.
Az elkészített közeg színe fehéres és pontyos.
Ha a fent leírt készítményhez glükózzal kíván készíteni kukoricaliszt, adjon hozzá 10 g glükózt.
Kereskedelmi kukorica liszt agar
Mérjünk be 17 g dehidratált közeget és oldjuk fel 1 liter desztillált vízben. A keveréket melegíthetjük, óvatosan rázva, hogy teljesen feloldódjon. Sterilizáljuk autoklávban 121 ° C-on, 15 fontnál, 15 percig.
Öntsön steril Petri-csészékbe. Hagyja megszilárdulni. Fordítsa meg és tárolja a hűtőszekrényben felhasználásig. Használat előtt be kell hűteni.
A pH-nak 25 ° C-on 6,0 ± 0,2-nek kell lennie.
Kukoricaliszt agar Tween 80-dal
Az ISO 18416 szabványnak való megfelelés érdekében a kukoricadara agart az alábbiak szerint kell elkészíteni:
Mérjünk be 65 grammot literben, és adjunk hozzá 10 ml Tween 80-at. Melegítsük és forraljuk néhány percig, amíg fel nem oldódik, ügyelve arra, hogy ne túlmelegedjenek. Sterilizáljuk 121 ° C-on 15 percig.
Kukoricaliszt agar glükózzal
A Trichophyton rubrum telepek kromogén erejének javítása és a T. mentagrophytes-től való megkülönböztetés céljából 0,2% glükózt adhatunk az eredeti képlethez. Nincs szükség Tween 80-ra, mivel a glükóz gátolja a chlamydospórák képződését.
Használat
Elsősorban a kukoricaliszt-agar felhasználását a Candida törzsek vizsgálatára szánják, elősegítve azok azonosítását az albicans fajokban a chlamydospórák jellegzetes megfigyelése révén. Vagyis ennek az agarnak az alkalmazása az ezen élesztők azonosításának kiegészítő módszerét szolgálja.
Ezen a agaron mind szafitikus, mind patogén fajok fejlődhetnek, de mindegyik jellegzetes micélium-szerkezetet képez. Például a Torulopsis nemzetség fajai nem termelnek micéliumot és csak blastoconidia által szaporodnak.
Hasonlóképpen, a Trichosporon és a Geotrichum fajok artroconidia-kat termelnek a kukoricaliszt agaron, és néha nehéz megkülönböztetni egymást.
A Geotrichum nemzetség Arthroconidia a jégkorong-botra emlékeztető hifák kiterjesztését eredményezi.
A Trichophytom rubrum azonosításához szintén hasznos a pigmentek előállítása glükózzal kiegészített kukoricaliszt-agar felhasználásával.
elvetett
Az elsődleges táptalajban - Sabouraud agarban - a klinikai mintákból, kozmetikumokból és talajokból nyert gyanús Candida kolóniákat, többek között, szubkultúrázzák a kukoricaliszt agaron. A tápközeget oltottuk és inkubáltuk 22 ° C-on 24-48 órán át. Az inkubációs idő meghosszabbítható, ha szükséges.
Chlamydospore demonstráció
Ebből a célból a Tween 80-at tartalmazó kukoricaliszt-agart Dalmau módszerrel kell beoltani. Ez a módszer abból áll, hogy a gyanús kolónia egy részét a platina fogantyúval vesszük, és három párhuzamos vágást végezzünk közepén, a fogantyút 45 ° -on tartva. A darabokat egymástól 1 cm távolságra kell elválasztani.
Ezt követően egy korábban lángolt burkolatot helyeznek az elültetett csíkokra úgy, hogy a felét lefedik, a másikat pedig nem fedik le.
Inkubálja a beoltott lemezeket 30 ° C-on 48-72 órán keresztül, majd mikroszkóp alatt vizsgálja meg a fedőlemezt.
Gomba törzsek fenntartása
A törzsek fenntartása érdekében a beoltott és megnövelt lemezeket hűtőszekrényben tartják (4–8 ° C). Ilyen módon több hetet is igénybe vehetnek és felhasználhatók oktatási vagy kutatási célokra.
QA
A sterilitás ellenőrzése céljából egy lemezt szobahőmérsékleten oltás nélkül inkubálunk, várhatóan nem lesz növekedés vagy színváltozás.
A minőség-ellenőrzés céljából ismert törzseket vethetünk, mint például: Staphylococcus aureus, ATCC 6538, Escherichia coli ATCC 25922, Aspergillus niger ATCC 16404, Candida albicans ATCC 1023, Saccharomyces cerevisiae ATCC 9763.
A várt eredmények a S. aureus és az E. coli részleges gátlása. Noha a törzsek többi részén kielégítő növekedés várható.
Az Aspergillus niger fekete és spórás telepekkel növekszik körülbelül 5 napos inkubációs idő alatt.
Candida albicans élesztőcsaládok chlamydospóratermeléssel.
A Saccharomyces cerevisiae nagy élesztősejteket termel.
korlátozások
A lemez alján sárga csapadék képződik, amelyet nem szabad összekeverni a kolóniákkal.
Irodalom
- Neogen Laboratories. Kukoricaliszt agar. Elérhető a következő címen: foodsafety.neogen.com.
- Culture Media Microkit. Kukoricaliszt agar. Elérhető a Medioscultivo.com oldalon.
- Linares M., Solís F. Élesztő azonosítási útmutató. Elérhető a következő címen: http: //www.guia.revibero.
- Urcia F, Guevara M. Rev. Perú Med.Exp. Közegészségügy, 2002; 19 (4): 206-208. Elérhető a Scielo.com oldalon
- Casas-Rincón G. Általános mikológia. 1994. Venezuelai Központi Egyetem 2. kiadása, könyvtári kiadások. Venezuela Caracas.
- Forbes B., Sahm D., Weissfeld A. (2009). Bailey és Scott mikrobiológiai diagnózisa. 12 ed. Szerkesztő Panamericana SA Argentina.
- Koneman E, Allen S, Janda W, Schreckenberger P, Winn W. (2004). Mikrobiológiai diagnózis. 5. kiadás Szerkesztő Panamericana SA Argentina.
- Castillo E. A Candida nemzetség izolálására és felismerésére szolgáló néhány makro- és mikroszkópos módszer összehasonlító vizsgálata. Kolumbiai Rev. of Pharmaceutical Chemical Sciences. 1970; 3 (1): 33-57. Elérhető a Ciencias.unal.edu.co oldalon
